摘要:mRNA技术在新冠疫情期间取得了显著进展,成为疫苗研发的关键方向。其独特优势包括高效的蛋白质表达和快速的研发周期,使其在传染病防控和癌症治疗等领域展现出巨大潜力。
mRNA技术在新冠疫情期间取得了显著进展,成为疫苗研发的关键方向。其独特优势包括高效的蛋白质表达和快速的研发周期,使其在传染病防控和癌症治疗等领域展现出巨大潜力。
然而,如何确保mRNA产品的稳定性仍是一个严重挑战,影响其有效性和全球可及性。研究表明,通过优化mRNA结构、筛选合适的辅料和改进生产工艺,同时加强稳定性研究并进行高效质控,可以显著提高mRNA的稳定性,从而增强其在疫苗和治疗中的应用效果。
LabChip微流控毛细管电泳分析系统以其高灵敏度和高通量的特点,为mRNA的稳定性评估带来了革命性的变革。本文研究利用LabChip® GXII Touch™系统,对mRNA在溶液和冻干制剂中的稳定性和降解机制进行了深入研究,并展示了该系统如何用于分析封装在脂质纳米颗粒 (LNP) 中的mRNA。
图1:LabChip微流控毛细管电泳分析系统
应用场景
溶液与冻干制剂:LabChip GXII Touch系统适用于溶液和冻干制剂中的mRNA,为mRNA的多种形式样品提供纯度和稳定性评估。
mRNA-LNP:系统还能分析封装在LNP中的mRNA,对于理解和改进mRNA-LNP样品的制备非常重要。
实验流程揭秘
mRNA制备:使用限制性内切酶AscII线性化后的质粒pKT305为DNA模板,通过体外转录(IVT)制备mRNA。
mRNA溶液及制剂准备:将mRNA稀释至15 μg/mL,制备溶液制剂;同时,在台式冷冻干燥机中将溶液制剂冻干,制备冻干制剂。
mRNA-LNP制备:使用纳米药物制备系统制备含有脂质纳米颗粒的mRNA,用于LabChip分析的mRNA-LNP样品制备根据表1进行优化。
稳定性测试:将溶液和冻干制剂在20°C或50°C下孵育12小时,每2小时取样一次,分析降解情况。
分析方法:使用LabChip GXII Touch系统,通过电泳图分析mRNA的主峰面积和降解产物弥散条带的积分面积。
图2:mRNA稳定性研究流程图
表1:mRNA-LNP样品制备条件优化
技术与数据讨论亮点
微流控电泳技术:相较于HPLC等方法,分析通量更高,速度更快,精度、分辨率和灵敏度也更高。
高灵敏度检测:LabChip GXII Touch系统能够分析低至15 ng/μL的mRNA制剂,精确监测50-90%降解动力学。
高通量分析:每次运行可分析多达96甚至192个样品,无需人工操作,大幅提升研究效率
降解曲线:通过监测主mRNA峰的面积百分比,系统能够揭示溶液和冻干制剂的降解曲线。在50°C下,mRNA溶液和冻干制剂的降解程度明显高于20°C。此外,冻干制剂在50°C下的降解尤为严重,表明去除水分并不能减少降解。
图3:冻干样品在50°C下孵育2小时(蓝色)和12小时(红色)后的电泳图谱(A);从电泳图生成相应的凝胶图像(B)
图4:LabChip软件分析的mRNA降解曲线,溶液(A)和冻干制剂(B)(n=3,误差线是平均值的标准误差)。
mRNA-LNP样品分析:通过添加表面活性剂和甲酰胺,破坏脂质和mRNA之间的相互作用,优化mRNA-LNP样品处理过程,以实现mRNA的有效解离并降低对其质量的影响,并展示了LabChip如何用于分析封装在LNP中的mRNA。
图5:样品制备过程中不加热(A),70 °C加热2分钟(B)和70 °C 加热10分钟(C)时mRNA-LNP样品的电泳图。
结论与展望
这项研究不仅展示了LabChip GXII Touch系统在评估低浓度mRNA制剂稳定性方面的高灵敏度和高通量能力,还深入探讨了mRNA-LNP的样品制备步骤,为获得高质量的电泳图谱提供了实践指导,对于理解和改进mRNA-LNP样品的制备非常重要。随着mRNA技术的应用范围不断扩大,LabChip GXII Touch系统将成为开发和制造新型mRNA产品的重要工具。它的快速、可靠分析能力,将为预防和治疗更多疾病的mRNA产品开发提供有力支持。
参考文献
1. Muramatsu, H., et al. Lyophilization provides long-term stability for a lipid nanoparticle-formulated, nucleoside-modified mRNA vaccine. Molecular Therapeutics 30 (2022) 1941-1951.
2. Schoenmaker L., et al. mRNA-lipid nanoparticle COVID-19 vaccines: Structure and stability. International Journal of Pharmaceutics 601 (2021) 120586.
3. Issa W., et al. Methods for HPLC analysis. International patent WO 2019/036685 AI. 21 Feb. 2019.
4. 4. Thayer J. R., et al. Identification of RNA linkage isomers by anion exchange purification with electrospray ionization mass spectrometry of automatically desalted phosphodiesterase-II digests. Analytical Biochemistry 399 (2010) 110-117.
5. Spivak V.B., et al. Analysis of mRNA heterogeneity and stability. International Patent WO 2014/144711 AI. 18 Sept. 2014.
6. Kahle J., et al. The next generation of capillary electrophoresis instruments: Performance of CE-SDS protein analysis. Electrophoresis 39 (2018) 311-325.
7. Roces, C. B., et al. Manufacturing considerations for the development of lipid nanoparticles using microfluidics. Pharmaceutics 12 (2020) 1095.
8. Raffaelle, J., et al. Development of a microchip capillary electrophoresis method for determination of the purity and integrity of mRNA in lipid nanoparticles vaccines. Electrophoresis 0 (2021) 1-6.
来源:爱讲历史的张燕