摘要:ENCODE 计划揭示了人类基因组超过 80% 的基因组区域能够转录产生“暗物质”之称的 RNA。根据 RNA 的 5' 端是否具有帽子修饰结构,这些可以被分为两大类:1)帽子结构的(capped RNA,capRNA);2)非帽 RNA(noncapped
编辑丨王多鱼
排版丨水成文
ENCODE 计划揭示了人类基因组超过 80% 的基因组区域能够转录产生“暗物质”之称的 RNA。根据 RNA 的 5' 端是否具有帽子修饰结构,这些可以被分为两大类:1)帽子结构的(capped RNA,capRNA);2)非帽 RNA(noncapped RNA,napRNA)。除 mRNA 和部分长非编码外,其余几乎所有均属于 napRNA。
这些 napRNA 不仅通过作为非编码 RNA(ncRNA)调控多种生物学过程,还作为加工产物解析特定的 RNA 生物生成过程。然而,由于其长度异质性、末端修饰多样性以及复杂的二级结构等,鉴定这些 napRNA 面临巨大挑战。
为应对这一挑战,中山大学生命科学学院杨建华/李斌/屈良鹄教授团队开发了NAP-seq技术,并于 2025 年 9 月 17 日在Nature Protocols期刊发表了题为:NAP-seq for full-length noncapped RNA sequencing 的论文,系统介绍了该方法的设计原理与实验步骤。
图1. NAP-seq的设计原理和实验步骤
NAP-seq 技术具有以下显著优势(图2):
1)大规模新发现:在人类和小鼠中,分别鉴定出超过 16000 条 和 9500 条新的 napRNA,展现出远超传统方法的发现能力。
2)单核苷酸分辨率的全面 napRNA 分析: 定制化接头序列能够同时捕获 napRNA 的两端,从而在单核苷酸分辨率下解析全长序列,并发现具有特征性末端基序和结构元件的 napRNA。
3)高效检测修饰 RNA 与复杂结构 RNA:T4 PNK 和 SuperScript IV 逆转录酶的使用,使 NAP-seq 能够检测多种 RNA 修饰和高度稳定的二级结构RNA。
4)富集低丰度 napRNA:通过基于 RNase H 的去除策略,有效去除高丰度的 rRNA、snoRNA 及其他 ncRNA,去除效率可达 99.9%,从而显著提升低表达 napRNA 的发现率。
5)确保全长 cDNA 合成:巢式逆转录引物设计保证了长链 napRNA 的全长 cDNA 扩增,并最大程度减少错误引物引发的伪影。
6)拓展 napRNA 家族的检测范围: 在建库前设置的片段大小选择(≥100 nt),使 NAP-seq 能够识别数千条被传统小 RNA 测序忽略的长 napRNA(≥100 nt),包括 C/D box RNA、H/ACA box RNA 以及 Pol III 转录 RNA 的新亚类,序列长度可达约 2000 nt。
7) 精确定量与减少偏倚:在接头中引入条形码,有助于消除 PCR 扩增偏倚,并减少因末端连接效率差异导致的序列特异性偏差,实现对 napRNA 的更精准定量。
8) 双平台整合:NAP-seq 结合 Oxford Nanopore 测序(NAP-seq-TGS) 与 Illumina 测序(NAP-seq-NGS)的优势,前者实现实时、直接的全长分子分析,后者提供碱基水平的高精度短读长序列。研究人员可根据不同研究需求独立或联合使用两类技术,获得更全面的 napRNA 特征信息。
9) 高效利用样本:相较于 TERA-seq 等全长 RNA 测序方法至少需 75 μg RNA,且仅限 ONT 平台,NAP-seq 仅需 1 μg RNA 即可完成建库,极大拓展了其在有限样本研究中的适用性。
10) 流程化的计算机分析:配套开发 cutAdapter、napSeeker 等软件与分析流程,能够快速发现并注释多类型 napRNA。
图2. NAP-seq的技术亮点
NAP-seq 还展现出广泛的新应用前景:
1) 临床样本和体液分析:通过检测临床样本及体液(如血浆)中的 napRNA,NAP-seq 可助力发现新型疾病标志物和治疗靶点,为精准医学提供新机遇。
2)极端环境微生物研究:NAP-seq 可用于鉴定极端环境中微生物的多样化 napRNA,揭示新型防御系统及独特生物学机制,为微生物群落研究开辟新方向。
3) RNA 末端加工机制解析:NAP-seq 能够系统表征非帽RNA的末端加工过程,揭示调控 RNA 稳定性、加工及功能的未知机制,为 RNA 生物学研究提供新视角。
综上,NAP-seq 作为一种多功能、高精度的测序技术,不仅适用于鉴定任何细胞模型、组织和物种中的调控型 napRNA,还为揭示复杂 RNA 调控途径提供了强大工具,在基础生物学和临床研究领域具有广阔的应用潜力。
中山大学生命科学学院杨建华教授、李斌副教授和屈良鹄教授为论文通讯作者,中山大学生命科学学院刘树榕特聘副研究员为论文第一作者,该工作得到实验室其他成员的大力支持。
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来源:科学旁观者