摘要:谷胱甘肽过氧化物酶(GPx)是一种帮助维持氧化还原平衡并抵御氧化应激的酶。GPx催化还原H₂O₂和有机氢过氧化物,以谷胱甘肽作为辅底物,防止活性氧(ROS)的积累,从而避免对蛋白质、脂质和DNA造成损伤。GPx广泛分布,尤其在代谢活跃的器官(如肝脏、肾脏、肺部
谷胱甘肽过氧化物酶(GPx)是一种帮助维持氧化还原平衡并抵御氧化应激的酶。GPx催化还原H₂O₂和有机氢过氧化物,以谷胱甘肽作为辅底物,防止活性氧(ROS)的积累,从而避免对蛋白质、脂质和DNA造成损伤。GPx广泛分布,尤其在代谢活跃的器官(如肝脏、肾脏、肺部和红细胞)中含量丰富。其表达水平受环境因素调节,包括饮食中的硒和氧化应激水平。GPx缺乏与多种病理状况相关,包括神经退行性疾病、心血管疾病、癌症和年龄相关性黄斑变性。AkrivisBio的谷胱甘肽过氧化物酶活性检测试剂盒是一种简单、灵敏的检测方法,能够评估多种样本中的GPx活性,灵敏度低于每孔0.2毫单位。
艾美捷谷胱甘肽过氧化物酶活性测定试剂盒:
货号:MA-0137
检测类型:定量检测
应用:一种基于微孔板的比色法检测方法,用于在多种样本中测量谷胱甘肽过氧化物酶(GPx)活性,灵敏度低于每孔0.2毫单位。
灵敏度:低于0.2毫单位/孔
储存条件:-20°C
运输温度:冰凝胶包运输
保质期:自发货之日起一年
谷胱甘肽过氧化物酶活性测定试剂盒检测原理:
1.在还原型谷胱甘肽存在的情况下,GPx还原添加的枯烯氢过氧化物,过程中生成氧化型谷胱甘肽(GSSG)。
2.谷胱甘肽还原酶将GSSG还原回谷胱甘肽的还原型(GSH),同时将NADPH转化为NADP。
3.通过在340纳米处监测反应,直接跟踪NADPH的减少。
检测试剂:
-检测缓冲液:50毫升(MA-0137A)
-NADPH:冻干粉,蓝色试剂瓶(MA-0137B)
-谷胱甘肽还原酶:2微升,绿色试剂瓶(MA-0137C)
-还原型谷胱甘肽(GSH):冻干粉,琥珀色试剂瓶(MA-0137D)
-枯烯氢过氧化物:2微升,黄色试剂瓶(MA-0137E)
-GPx阳性对照:冻干粉,红色试剂瓶(MA-0137F)
储存和处理:
未开封的试剂盒应储存于-20°C。使用前将检测缓冲液恢复至室温。打开前将所有小瓶短暂离心数秒。
-检测缓冲液:即用型,储存于4°C。
-NADPH:用0.5毫升去离子水溶解。储存于-20°C。
-谷胱甘肽还原酶:用220微升检测缓冲液溶解。使用时置于冰上。储存于-20°C。
-还原型谷胱甘肽:用220-20°C。
-枯烯氢过氧化物:用1.25毫升检测缓冲液溶解。储存于4°C。
-谷胱甘肽过氧化物酶阳性对照:用100-20°C。
-在使用过程中,所有含有酶的物质(样本、谷胱甘肽还原酶、GPx阳性对照)应置于冰上。
检测步骤:
1.标准曲线:将25微升NADPH溶液转移至975微升去离子水中,得到1毫摩尔/升NADPH溶液。将0、20、40、60、80、100微升的1毫摩尔/升NADPH溶液分别加入96孔板中,分别得到0、20、40、60、80、100纳摩尔。用检测缓冲液将所有孔的体积调整至100微升。在340纳米处测量吸光度,绘制标准曲线。
2.样本准备:在冰上将组织(10毫克)、细胞(10⁶个)或红细胞(100微升沉淀)在100微升检测缓冲液中匀浆化。在4°C下以16,000×g离心5分钟;将清亮的上清液转移至新的试管中并置于冰上。直接将血清转移至孔中。将样本的2-50微升转移至96孔板的孔中。用检测缓冲液将所有孔的体积调整至50微升。
注意:NADPH不稳定,容易被多种酶降解。未立即分析的样本应储存于-80°C或更低温度。所有样本读数必须落在标准曲线范围内。任何低于约0.3-0.4吸光度的样本读数都可能处于非线性范围内,应稀释后重新检测。
3.阳性对照和背景对照:将5微升GPx阳性对照转移至一个孔中,并用检测缓冲液调整至50微升。将50微升检测缓冲液转移至一个孔中作为背景对照,以校正可能发生的任何非GPx导致的NADPH损失。
4.准备反应:每个反应需要40微升预反应混合液。
5.启动反应:向测试样本和阳性对照(不要向背景对照孔)中加入10微升枯烯氢过氧化物以启动反应。
6.测量:在25°C下,在340纳米处动力学监测反应,时间足够长以建立反应的线性速率。
注意:在加入枯烯氢过氧化物之前,测试和阳性对照孔在15分钟预孵育后的初始340纳米吸光度应大于1.0。如果读数小于1.0,意味着样本中要么GPx含量过高(稀释后重新检测),要么GSSG含量过高。可以通过使用10千道尔顿离心过滤器从样本中去除小分子来减少高GSSG。
7.典型结果:
8.计算:从所有标准品中减去0标准品的值。绘制标准曲线。确定标准曲线的斜率。确定背景对照和测试孔的斜率。这些通常由于初始滞后和由于底物耗尽而后期减缓,呈现出轻微的S形。确定测试样本线性中间部分的斜率,并减去背景对照的斜率以校正非GPx贡献。将校正背景后的斜率除以标准曲线的斜率,得到每孔样本的斜率(纳摩尔/分钟,即毫单位)。要将结果换算回每单位样本的毫单位:
-A.将每孔的毫单位除以加入孔中的样本体积=每微升样本的毫单位。
-B.将每微升样本的毫单位乘以上述步骤2中离心后获得的上清液总体积=样本中总GPx的毫单位。
-C.将样本中的总GPx除以组织毫克数或细胞数量等=每毫克(或细胞数量等)的GPx活性毫单位。
仅用于研究!
来源:老妖聊科学